注射给药：静脉、腹腔、皮下、皮内、肌肉
消化道给药：灌胃、自由摄取、十二指肠、直肠
其他部位给药：呼吸道、皮肤、脑内、关节腔内、脊髓腔内、滴眼、生殖器等
一、给药途径和方法
给药途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。
（一）注射给药法
1、皮下注射： 注射时，用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器，将注射针刺入皮下，若针头容易摆动则证明针头已在皮下，推送药液。拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。皮下注射的部位，一般小鼠在背部，大鼠在背部或侧下腹部。
2、皮内注射： 局部脱去被毛，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
3、肌肉注射： 肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。大、小鼠体小、肌肉少，很少采用肌肉注射给药，如必须肌注给药，常在股部注射。
4、腹腔注射： 先将动物固定，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推时约 0.5 厘米，再使针头与皮肤呈45度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。
5、静脉注射： 小鼠和大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内（可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替），除毛后置尾巴于 45~50 度的温水中浸泡几分钟或用75%酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。开始注药时宜少量缓注，如无阻力，表示针头已进入静脉，如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾部方向移动针头再次穿刺。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽量从尾的末端开始。
（二）经口给药法
1、口服法： 把药物放入饲料或溶于饮水中让动物自动摄取。此法优点在于简单方便，缺点是不能保证剂量准确。一般适用于对动物疾病的防治或某些药物的毒性实验，制造某些与食物有关的人类疾病动物模型。
2、灌胃法： 在急性实验中，多采用灌胃法。此法剂量准确。灌胃法是用灌胃器将所应投给动物的药灌到动物胃内。灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。小鼠的灌胃针长约4~5cm，直径约1mm，大鼠的灌胃针长约 6~8cm，直径约1.2mm。灌胃针的尖端焊有一小圆金属球，金属球为中空的。焊金属球的目的是防止针头刺入气管或损伤消化道。针头金属球端弯成20度左右的角度，以适应口腔、食道的生理弯曲。
灌胃方法：用左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口腔插入，压迫鼠的头部，使口腔与食道成一直线，将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌水平，为防止插入气管，应回抽注射器针栓，如无空气被抽回，即可将药液注入。一般灌胃针插入小鼠深度为 3~4cm，大鼠或豚鼠为 4~6cm。常用灌胃量小鼠为0.2~1ml，大鼠1~4ml，豚鼠1~5ml。
（三）呼吸道给药
呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态的药物或毒气，均需要通过动物呼吸道给药。如实验时给动物乙醚作吸入麻醉、用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等，特别在毒理学实验中应用更为广泛。
（四）皮肤给药
为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均需采用经皮肤给药方法。如兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后，将一定的药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收。
（五）脊髓腔内给药
此法主要用于椎管麻醉或抽取脑脊液。
（六）脑内给药
此法常用于微生物学动物实验，将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后的各种变化。
（七）直肠内给药
此法常用于动物麻醉。兔直肠内给药时，常采用灌肠用的胶皮管或用14号导尿管代替。
（八）关节腔内给药
此法常用于关节炎的动物模型复制。
二、实验动物用药量的确定
动物实验所用的药物剂量一般按毫克/千克体重（mg/kg）计算。某种药物对于某种动物的剂量来自于实践。当我们对某种动物需要解决药物的适当剂量问题时，首先应查阅有关资料，如查不到，可先用致死量的1/10~1/5 进行尝试，也可用其它动物或人的剂量来换算。一般说来，动物的耐受性比人大，因此单位体重的用药量比人要大，可按下列比例换算：假设人的用药量为 1， 小鼠、大鼠为 25~50。
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